1.产品介绍
红色荧光蛋白(Red Fluorecent Protein,RFP)是从海葵中分离得到的一种分子标记,常用于研究蛋白质的定位、报告基因表达和蛋白-蛋白质相互作用。Anti-RFP Affinity Beads 4FF是一种偶联了抗RFP抗体的琼脂糖填料,可以用于天然RFP、RFP突变体及其融合蛋白的免疫沉淀、免疫共沉淀、亲和层析等实验。本产品具有以下特点:1)使用的抗体和RFP之间具有极高的亲和力, 可以高效捕获裂解上清中的RFP标签蛋白;2)免疫沉淀后,SDS-PAGE检测, 背景更干净,更有利于鉴定蛋白相互作用。3)琼脂糖基材具有非特异性吸附低,兼容性好的特点,每毫升载量大于1 mg(最高可达到5 mg/ml RFP结合载量),可以用于RFP融合蛋白的大量纯化。
表1. Anti-RFP Affinity Beads 4FF产品性能
性能 |
指标 |
基质 |
高度交联的4%琼脂糖微球 |
配体 |
Anti-RFP Antibody |
载量 |
>1mg RFP标签蛋白/ml介质 |
粒径 (μm) |
45-165 |
最大流速 |
0.3 MPa, 3 bar |
试剂耐受 |
Stable up to 80℃,1 mM DTT,3 M Guanidinium·HCl,8 M Urea,2 M NaCI,2% Nonidet P40 Substitute,1% SDS,1% Triton X-100
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储存缓冲液 |
1× PBS(含防腐剂) |
储存温度 |
2-8℃ |
2. 试剂准备
2.1 Buffer的准备
所用水和Buffer在使用之前建议用0.22μm或0.45 μm滤膜过滤。
Ø平衡/洗杂 Buffer: 50mM Tris,0.15M NaCl, pH 7.4
Ø酸性洗脱Buffer: 0.1 M glycine HCI, pH3.0
Ø中和液:1M Tris-HCl, pH8.0
2.2 样品准备
上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用平衡/洗杂缓冲液对样品或细胞培养液稀释,或者用平衡液透析。
样品在上样前建议离心或用0.22μm 或0.45μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
3 样品纯化
3.1柱层析
1.将Anti-RFP Affinity Beads 4FF 装入合适的层析柱,层析用5倍柱体积的平衡液进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下。
2.将样品加到平衡好的Anti-RFP Affinity Beads 4FF中,收集流出液,可以反复上样增加结合效率。
3.用10-20倍柱体积的洗杂液进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。
4.酸性洗脱:使用5倍柱体积的酸性洗脱液洗脱,收集管中预先加好中和液,加入量15-25μl中和液/ml洗脱液,分管收集。
注:酸性洗脱后填料要立即用平衡液平衡,Anti-RFP Affinity Beads 4FF 在洗脱液中不要超过20 min。
5.使用3倍柱体积的洗脱液清洗,然后用平衡液平衡至中性。
6.使用3倍柱体积的0.02%叠氮化钠,1×PBS平衡,2-8℃保存。
3.2静态吸附
1.填料准备:取适量的Anti-RFP Affinity Beads 4FF加入层析柱中,流干保护液。加入5倍柱体积的平衡液清洗。
2.加入样品溶液,4°C或室温震荡孵育至少30 min(不能磁力搅拌),确保填料与样品溶液充分混合。
3.孵育完毕后,将填料混合液离心(5000×g离心1 min)或过滤收集填料。
4.将填料装入层析柱中,用平衡液清洗直至紫外稳定。
5.用酸性洗脱液洗脱。
6.填料再生和保存参考3.1中5.和6.。
3.3免疫沉淀操作流程
1.填料准备:取40μl的Anti-RFP Affinity Beads 4FF(柱体积20μl)混合液加入到1.5ml离心管中,5000×g离心1min,吸弃上清。
2.填料加入0.5ml平衡液,悬浮填料(使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用),5000×g离心1min,吸弃上清。重复一次。
3.加入200-1000μl样品到处理好的填料中,混合均匀,在室温下置于翻转混合仪轻轻翻转离心管,促使样品和填料充分接触并吸附,室温至少1小时(对于易降解的蛋白,建议使用蛋白酶抑制剂,并在2-8℃层析柜中操作,冷库亦可)。5000×g离心1min,吸弃上清,小心 不要吸走填料。
4.洗杂:加入0.5ml的洗杂液,悬浮填料,轻轻混匀,5000×g离心1min,吸弃上清。再重复三次。确保去除非特异性吸附。
5.样品洗脱:可根据后期检测的需要选择不同的洗脱方法。
A:酸性洗脱
加入100μl的洗脱液,悬浮填料,室温孵育5min。 5000×g离心1min。小心取出上清,不要吸到填料,用中和液中和。洗脱样品放置4°C,长时间放置-20°C保存。
B:变性洗脱
实验室常规蛋白上样缓冲液(Loading Buffer)中含有β-巯基乙醇和DTT,可以使填料中抗体重链和轻链断开。含有SDS的样品缓冲液可以使介质配体变性,洗脱后的Anti-RFP Affinity Beads 4FF没办法重复使用。
每管中加入20μl 2× Loading Buffer, 95°C加热5min。 5000×g离心1min,吸取上清进行SDS-PAGE电泳检测。
4. 问题及解决方案
问题 |
原因分析 |
推荐解决方案 |
洗脱组分中没有目的蛋白 |
种属不同 |
并不是每一种RFP蛋白 都可以结合Ant-RFP Afnity Beads,本产品确定结合TagRFP、turbo-RFP、 DsRed、 mRFP 、mChery 、mOrange 、 mPlum 、
mRuby 、 mKate2、 mRFPruby。 |
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样品中无标签融合蛋白 |
纯化前Westem检测是否有RFP标签融合蛋白。 |
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空间构象改变 |
Anti-RFP Afinity Beads对于RFP的结合,强烈依赖于RFP的空间构象,影响RFP构象的缓冲条件会影响Beads和RFP之间的结合。 |
副孔样品差异较大 |
细胞转染和样品制备差异 |
通常样品制备以后,需要进行蛋白浓度定量,各正副孔上样量需要一致。 |
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填料损失 |
填料在洗涤过程中有损失,琼脂糖填料离心后,每次移液需要注意不要吸走填料。最后一次洗涤以后,如果有液体残留,不同样品之间需要留有相同体积的残液。降低操作误差。 |
背景高 |
洗涤不充分,洗杂液残留 |
填料需要轻轻吹打分散开。可以考虑用SDS-PAGE的上样针,插入Beads中,尽量移走残液。最后-次洗杂更换新离心管。 |
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核酸影响 |
样品裂解时候,如果核酸过多,可能造成大量非特异性吸附,此时推荐使用本公司的超级核酸酶促进样品处理。同时也要注意,高速离心以后,转移样品不要将沉淀的细胞碎片转移。 |
结合效率低 |
孵育时间过短 |
在高浓度的RFP蛋白溶液中(1mg/ml) ,至少需要30分钟,填料才可以达到饱和。样品浓度低时建议延长时间至1 h以上或4°C过夜。 |
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填料粒径大,空间位阻影响结合 |
选择粒径更小的磁珠Anti-RFP Affinity Beads 4FF (1 μm),磁珠和RFP的结合速度可以大大提高,洗涤的时间也可以缩短。 |