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常见问题
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Q1:
这个抗体对 能检测嵌合抗体中的人源Fc吗？
天然的FC肯定可以，人源fC不能保证一定识别。因为不是所有的人源FC都有完全一样的构象
Q2:
为确保抗原有效吸附在铝佐剂上推荐混匀多长时间？
混匀后静置半小时，如果有沉降用前可以再摇一摇
Q3:
我们mIHC的染料是超强荧光防淬灭的吗？就是染完后，放几天后还能看到颜色吗？还是得尽快观察？
是超强荧光防淬灭的，放几个星期都没有关系
Q4:
乳化失败的原因有哪些？失败了该怎么办？
1. 佐剂成分问题： 弗氏完全佐剂由油相（一般为矿物油）和水相（一般为生理盐水）组成。如果这两个相的配比不正确或者其中某一方受到了污染，可能导致乳化失败。
2、温度问题： 乳化是一个温度敏感的过程。在制备弗氏完全佐剂时，需要确保在适当的温度下进行，通常在室温或稍高于室温的条件下。温度过低或过高都可能影响乳化效果。
3、搅拌力度： 乳化过程中，需要有足够的搅拌力度来使油相和水相充分混合。如果搅拌不够充分，乳化效果可能不佳。 搅拌时间： 乳化需要一定的时间来确保充分的混合。过短或过长的搅拌时间都可能影响乳化的质量。
4、佐剂老化： 弗氏完全佐剂的质量会随着时间的推移而下降。如果佐剂过老，其中的乳化剂可能已经失去了活性，导致乳化效果不佳。
5、材料质量： 使用低质量或受到污染的油相或水相都可能导致乳化失败。 如果在制备弗氏完全佐剂时遇到乳化失败的问题，可以尝试优化上述因素，调整配比、温度、搅拌条件等。
6、更改抗原佐剂的使用比例：由佐剂：抗原 1:1，提高至1:2，增加抗原用量。
7、条件允许的话，可以直接免疫测试能否满足需求。
此外，检查所有用到的材料，确保它们的质量良好。在实验过程中，注意保持操作的干净和规范，避免外部污染的引入。如果问题持续存在，可能需要重新准备佐剂或考虑使用其他适当的佐剂 注意：补加上抗原含有SDS或者有机物，会影响乳化效果。
注：更换QuickAntibody系列水性佐剂，无需乳化，免除乳化烦恼。
Q5:
我的蛋白加了GST标签，还是在包涵体里，怎么纯化呢？
GST标签本身是一种高度可溶的蛋白质，当与目标蛋白融合表达时，能促进融合蛋白在宿主细胞（如大肠杆菌）中的正确折叠，减少形成包涵体（insoluble aggregates）的倾向，从而显著提高重组蛋白的可溶性表达水平。可以尝试低温诱导等条件增加可溶性表达。
包涵体蛋白可以尝试尿素(6-8M)、盐酸胍(6M)等变性，透析复性，测定蛋白活性满足要求可以继续后续纯化。尿素、盐酸变性条件下，会影响挂柱。复性后透析成柱子兼容的平衡buffer，或者PBS常规buffer，就可以继续尝试挂柱纯化
Q6:
这个产品的造模相关文献里都是25-50μg OVA蛋白，需要加入2-4mg 铝佐剂，想问下这里的铝佐剂胶体总体质量，还是胶体内的Al(OH)3纯物质，还是你们说明书给的铝离子含量？为什么有时候给的又是Al₂O₃含量？
您现在查阅到的文献多以Thermo早期货号为主，该产品当时说明书中给的是【 aluminum hydroxide (40mg/mL) 】，所以早期文献常见的是氢氧化铝含量2-4mg。
但实际上铝胶佐剂，虽然习惯被称为aluminum hydroxide，并不是确切的氢氧化铝（Al(OH)3），而是无定形或部分结晶的铝氧氢氧化物（AlO(OH)·nH₂O），并含有一些其他成分。在疫苗佐剂、抗酸剂或化妆品等制药应用中，以符合FDA、USP等其他标准，铝含量常需以更稳定、便于分析的Al₂O₃为基础提供COA报告（Assay Al2O3 %，Al₂O₃代表其“无水”或脱水形式，通过加热Al(OH)₃可得到Al₂O₃），进一步可换算为我们说明书标注的铝离子浓度，以反映了凝胶的复合性质。
有任何一种形式的含量，您都可以互相转换：Al(OH)₃ 分子量78， Al₂O₃ 分子量102，Al分子量26.98。
Q7:
请问闪电克隆试剂盒的引物设计方法有什么要求吗？
该产品通过同源重组法实现DNA克隆，原理与无缝克隆、Gibson克隆类似，遵循引物设计一般原则，无特殊要求。您可以通过说明书查看更多细节，或通过各类公共平台搜索此类关键词：无缝克隆、Gibson克隆、同源重组、引物设计等。
Q8:
佐剂乳化器 保修期是多久呢？损坏了可以维修吗？
该产品关键部件为马达和乳化针头，属于耗材类产品，查收后请在1周内完成运行测试，暂无法支持提供维修配件。如有特殊情况，可进一步与我们沟通
Q9:
添加因子本身就含有胎牛血清、链霉素、青霉素，我配培养基的时候还需要额外添加吗？
Hybridoma Feeder添加因子只作为细胞培养添加剂使用，不可代替血清、双抗，请根据需求单独额外添加血清和双抗。
Q10:
【慢病毒滴度快速检测试剂盒】里的缓冲液丢了，能用培养基或者PBS等其他试剂取代吗？
不能，层析液有裂解成分等关键组分，无法替代。
Q11:
慢病毒样本需要像ELISA试剂盒里一样先裂解预处理吗？
无需进行预处理。【慢病毒滴度快速检测试剂盒】的层析液即裂解液，在层流过程中即可将慢病毒样本进行较为充分的裂解，不影响检测结果。
ELISA检测有样本裂解步骤，而胶体金检测为滴加层析液（裂解液）在层流中进行样本裂解。对于样本是否充分裂解，我们进行过对比实验，即一组只利用层析液，另一组额外在裂解液中裂解0-60min，使用胶体金检测，结果未见显著增强。即裂解液在层流中裂解较为充分，即便有增强也可控制在胶体金方法15%的变异范围之内，而且检测卡本身也属于半定量检测方法。
Q12:
感觉上清里没有浓缩彻底，还可以再重新浓缩一次吗？
可以继续按照说明书里的步骤，重新操作一次
Q13:
能同时识别全长和p35吗
可以
Q14:
脱盐柱的原理是什么？
其工作原理主要是利用分子筛作用，根据被分离物质的分子大小不同来进行分离。样品进入离心脱盐柱后，比基质中最大孔径还要大的分子，不能进入基质胶，随着流动溶液沿着基质凝胶颗粒间的缝隙移动，下移速度较快，先被洗脱出柱；比基质孔径小的分子，会不断地进入到基质胶孔径内部，因此小分子量物质在基质内停留时间更长，下移速度较慢，在大分子之后被洗脱
Q15:
这个封片剂是水溶性的还是脂溶性的
水溶性的
Q16:
这个产品做化学发光免疫分析，类似ELISA模式。因实验需求，HRP用量较多，导致了光很强又淬灭很快的问题。请问A液和B液可以稀释嘛？用什么稀释？优先稀释哪个？
A液和B液可以使用纯水稀释。ECL化学发光试剂盒规格较大，elisa模式尝试并不怎么损耗试剂，A液和B液都可以尝试稀释一下。
Q17:
EGF的human和mouse同源性很低，只有55%。但你们有mouse的验证数据，所以是可以用在mouse上的是吗？
对的，可以的。这个方法是药典使用方法，是没问题的。目前业界基本都是用的这个方法。
同源性不是唯一判断标准。只要human的细胞因子，有mouse数据的，都是这种情况，哪怕同源性低，也是可以用的
Q18:
细胞因子这块，种属重要吗？还是序列同源性高，差异就不大？我要mouse的，你们只有human的，而有的活性数据里有用在小鼠细胞上的，有的没有小鼠的数据
理论上只要序列同源性高，活性差异就不大。同源性低的，在不同种属里使用剂量就会有差异，比如在L929小鼠的这个细胞，参考R&D的数据的话，human TNFa 活性作用在鼠上要比鼠源TNF-a的活性要弱4~5倍的样子，也就是效果是不如鼠源TNF-a的。
Q19:
我们为什么要在小鼠细胞里验证？没有Human的数据
用小鼠的这个细胞验证主要是因为人源细胞比较难采购，而且国内外知名品牌都是用鼠源L929做的测试
Q20:
sp20细胞的培养基里，谷氨酰胺还要额外再添加一次吗？1640里不是有谷氨酰胺吗？
一般1640培养基是含有的，但是有的时候放置过程可能会降解。为了保险起见，我们建议是添加上
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