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荧光共定位|直接法、间接法的抗体选择

时间 6/27/2024 11:15:50 AM

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客户:龙宝,我想要做荧光共定位,检测两个指标的表达和相互作用情况,该怎么选择抗体呢?有什么要注意的呢?
龙宝:

什么是免疫荧光和荧光共定位?首先我们来回顾下:

  1. 免疫荧光:是一种常用的细胞和组织学研究方法,用于观察特定蛋白或分子在生物样本中的位置和表达水平其基本原理是利用免疫学原理,即利用专门设计的抗体与目标蛋白或分子结合,然后通过荧光染料标记的二抗来可视化这些特定蛋白质。通过荧光显微镜观察,可以立即看到目标蛋白在样本中的位置和表达水平。
  2. 荧光共定位:有时候需要观察多个蛋白或分子在样本中的位置关系,这时就需要进行荧光共定位。在这种情况下,不同目标蛋白会分别使用标记了不同颜色荧光染料的二抗,然后通过荧光显微镜观察。例如,如果需要观察蛋白A和蛋白B之间的相互作用或共定位关系,可以使用标记红色和绿色荧光染料的二抗来标记这两种蛋白,然后在显微镜下观察它们的位置关系。
通过免疫荧光和荧光共定位技术,研究人员可以在细胞和组织水平上详细研究蛋白之间的相互作用、功能以及位置关系,从而帮助更深入地理解生物学过程。

确认实验方法:直接法or间接法?

  • 间接法:如上述原理中提到的,使用不带荧光标记的一抗与抗原结合,再通过两种带有不同荧光的二抗与一抗结合的方法就是间接法。虽然操作步骤稍多,但信号放大效果好,二抗选择范围广,性价比高。
  • 直接法:利用两种带有不同荧光的直标一抗与抗原结合。这种方法操作简单、耗时短、特异性高、背景低。但信号放大效果有限,直标抗体的选择范围较窄,价格较高。

 

选择合适的抗体

注意事项1:如果选用间接法,需要确保所选的两种荧光抗体互不干扰,避免交叉反应等。直接法不需加二抗,则不需考虑此项。
注意事项2:选择合适的荧光通道,避免荧光串色至关重要。荧光探针应该选择发射光谱分离比较大的且具有最小叠加的组合,通常选择绿色和红色作为主要通道,叠加区域显示黄色,而且人眼对绿色和红色色调更为敏感。此外,蓝色和绿色可形成青色,蓝色和红色可形成紫色。但考虑到人眼对蓝光的灵敏度较低,且DAPI常被用作细胞核的蓝色荧光标记,蓝色通道不常用作主要通道。选择合适的荧光染料还需考虑设备的配置,及目标蛋白的表达情况,荧光染料高度有强弱之分,抗原表达有高低区别,因此,对于一些低表达的抗原,我们在搭配对应抗体的染料时,应该选择荧光较亮的染料。



示例:
  • 直接法:直接选择带有不同荧光基团的抗体,如FITC-A抗体和PE-B抗体。
  • 间接法:选择不同种属来源的一抗,如鼠抗A抗体和兔抗B抗体,再根据一抗种属选择对应的荧光二抗,如AbBox Fluor 488-山羊抗小鼠二抗和AbBox Fluor 594-山羊抗兔二抗。确保一抗和二抗之间的特异性结合,避免交叉反应。

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附录:细胞免疫荧光操作步骤(供参考,请根据实际情况调整)
 
1、爬片:消化细胞于玻底培养皿,保证玻片上的细胞以单细胞层生长,细胞密度以达到75%-85%最佳。
2、固定:吸去培养皿中的培养基,用PBS清洗2-3遍。每个培养皿中加入4%多聚甲醛,室温静置15分钟,结束后用PBS清洗2-3遍。
3、透化:每个培养皿中加入1 mL 0.1%皂苷(或Triton X-100 等,溶于PBST中)透化细胞10-20分钟,结束后用PBS清洗2-3遍。注:如果是检测细胞质蛋白或者细胞膜蛋白的胞内段需要做此步骤。
4、封闭:每个培养皿中加入1 mL 1%-3% BSA(或同物种血清溶于PBST中)室温封闭30分钟,结束后除去BSA。
5、一抗孵育:在培养皿中滴入用1%-3% BSA(溶于PBST中)稀释好的一抗,4 ℃过夜孵育。一抗孵育结束后,1 mL PBS清洗2-3遍。
6、二抗孵育:按照实验需求,加入对应的荧光二抗(用1%-3% BSA的PBST稀释),室温避光孵育2小时,孵育结束后用PBS清洗2-3遍,每次5分钟,此过程以及余下的操作应全程避光。
7、DAPI染细胞核:在清洗完毕的细胞中滴加DAPI,室温避光静置约30秒,之后用PBS清洗2-3遍,每次5分钟。
8、封片:在细胞上滴加一滴抗荧光猝灭剂,晃动培养皿,使其均匀覆盖在细胞表面,盖上盖子。激光共聚焦系统记录结果。
希望以上内容能够帮助您更好地理解和应用免疫荧光共定位技术。如有更多疑问,请随时与我们联系。

编辑:小篮子、圆圈

 

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