荧光共定位|直接法、间接法的抗体选择
时间 6/27/2024 11:15:50 AM
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客户:龙宝,我想要做荧光共定位,检测两个指标的表达和相互作用情况,该怎么选择抗体呢?有什么要注意的呢?
龙宝:
什么是免疫荧光和荧光共定位?首先我们来回顾下:
- 免疫荧光:是一种常用的细胞和组织学研究方法,用于观察特定蛋白或分子在生物样本中的位置和表达水平。其基本原理是利用免疫学原理,即利用专门设计的抗体与目标蛋白或分子结合,然后通过荧光染料标记的二抗来可视化这些特定蛋白质。通过荧光显微镜观察,可以立即看到目标蛋白在样本中的位置和表达水平。
- 荧光共定位:有时候需要观察多个蛋白或分子在样本中的位置关系,这时就需要进行荧光共定位。在这种情况下,不同目标蛋白会分别使用标记了不同颜色荧光染料的二抗,然后通过荧光显微镜观察。例如,如果需要观察蛋白A和蛋白B之间的相互作用或共定位关系,可以使用标记红色和绿色荧光染料的二抗来标记这两种蛋白,然后在显微镜下观察它们的位置关系。
通过免疫荧光和荧光共定位技术,研究人员可以在细胞和组织水平上详细研究蛋白之间的相互作用、功能以及位置关系,从而帮助更深入地理解生物学过程。
确认实验方法:直接法or间接法?
- 间接法:如上述原理中提到的,使用不带荧光标记的一抗与抗原结合,再通过两种带有不同荧光的二抗与一抗结合的方法就是间接法。虽然操作步骤稍多,但信号放大效果好,二抗选择范围广,性价比高。
- 直接法:利用两种带有不同荧光的直标一抗与抗原结合。这种方法操作简单、耗时短、特异性高、背景低。但信号放大效果有限,直标抗体的选择范围较窄,价格较高。
选择合适的抗体
注意事项1:如果选用间接法,需要确保所选的两种荧光抗体互不干扰,避免交叉反应等。直接法不需加二抗,则不需考虑此项。
注意事项2:选择合适的荧光通道,避免荧光串色至关重要。
荧光探针应该选择发射光谱分离比较大的且具有最小叠加的组合,通常选择绿色和红色作为主要通道,叠加区域显示黄色
,而且人眼对绿色和红色色调更为敏感。此外,蓝色和绿色可形成青色,蓝色和红色可形成紫色。但考虑到人眼对蓝光的灵敏度较低,且DAPI常被用作细胞核的蓝色荧光标记,蓝色通道不常用作主要通道。选择合适的荧光染料还需考虑设备的配置,及目标蛋白的表达情况,荧光染料高度有强弱之分,抗原表达有高低区别,因此,对于一些低表达的抗原,我们在搭配对应抗体的染料时,应该选择荧光较亮的染料。
示例:
- 直接法:直接选择带有不同荧光基团的抗体,如FITC-A抗体和PE-B抗体。
- 间接法:选择不同种属来源的一抗,如鼠抗A抗体和兔抗B抗体,再根据一抗种属选择对应的荧光二抗,如AbBox Fluor 488-山羊抗小鼠二抗和AbBox Fluor 594-山羊抗兔二抗。确保一抗和二抗之间的特异性结合,避免交叉反应。
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附录:
细胞免疫荧光操作步骤(供参考,请根据实际情况调整)
1、爬片:消化细胞于玻底培养皿,保证玻片上的细胞以单细胞层生长,细胞密度以达到75%-85%最佳。
2、固定:吸去培养皿中的培养基,用PBS清洗2-3遍。每个培养皿中加入4%多聚甲醛,室温静置15分钟,结束后用PBS清洗2-3遍。
3、透化:每个培养皿中加入1 mL 0.1%皂苷(或Triton X-100 等,溶于PBST中)透化细胞10-20分钟,结束后用PBS清洗2-3遍。注:如果是检测细胞质蛋白或者细胞膜蛋白的胞内段需要做此步骤。
4、封闭:每个培养皿中加入1 mL 1%-3% BSA(或同物种血清溶于PBST中)室温封闭30分钟,结束后除去BSA。
5、一抗孵育:在培养皿中滴入用1%-3% BSA(溶于PBST中)稀释好的一抗,4 ℃过夜孵育。一抗孵育结束后,1 mL PBS清洗2-3遍。
6、二抗孵育:按照实验需求,加入对应的荧光二抗(用1%-3% BSA的PBST稀释),室温避光孵育2小时,孵育结束后用PBS清洗2-3遍,每次5分钟,此过程以及余下的操作应全程避光。
7、DAPI染细胞核:在清洗完毕的细胞中滴加DAPI,室温避光静置约30秒,之后用PBS清洗2-3遍,每次5分钟。
8、封片:在细胞上滴加一滴抗荧光猝灭剂,晃动培养皿,使其均匀覆盖在细胞表面,盖上盖子。激光共聚焦系统记录结果。
希望以上内容能够帮助您更好地理解和应用免疫荧光共定位技术。如有更多疑问,请随时与我们联系。
编辑:小篮子、圆圈
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